El Curso de Técnicas Integradas en Cultivo Celular y Análisis Cuantitativo edición 2025 se dictará del 23 de junio al 11 de julio en el Instituto de Investigaciones Biotecnológicas (IIB).  

Está compuesto por tres módulos que pueden tomarse de manera independiente: (1) Introducción al Cultivo Celular, (2) Trabajo en Cabinas de Bioseguridad y (3) Procesamiento y Análisis de Datos. El módulo 1 es virtual y en vivo, sin cupo. Los módulos 2 y 3 son presenciales y con cupos limitados. 

El curso completo está certificado por la Escuela de Bio y Nanotecnologías (EByN) de la UNSAM. Las docentes a cargo son las investigadoras del IIB Melisa Monteleone, Virginia Tribulatti y Ana González Wusener.

Podés preinscribirte hasta el 30 de mayo. Para solicitar información escribir a cursocultivo@iibintech.com.ar. Para preinscribirte completá el siguiente formulario (clic aquí).

Programa resumido

• MÓDULO 1: Teórico (virtual, sincrónico). 23/06 al 27/06. Sin cupo
• MÓDULO 2: Cultivo celular. Práctico (Presencial). 30/06 al 04/07. Cupos limitados
• MÓDULO 3: Análisis cuantitativo. Práctico. (Presencial). 07/07 al 11/07. Cupos limitados

 

Módulo 1. Introducción al Cultivo Celular. Virtual Sincrónico. Sin cupo.

La célula en cultivo: características y requerimientos. El laboratorio de cultivos celulares: equipos y cuidados. Incubadoras. Flujos laminares. Cabinas de bioseguridad. Microscopios. Material descartable. Medios de cultivo y suplementos. Bioseguridad. Contaminaciones. Líneas celulares: mantenimiento y preservación. Aspectos prácticos de recuento celular. Determinación de viabilidad celular. Buenas prácticas de trabajo. Expresión de genes heterólogos. Métodos de transfección. Sistemas de cultivo de células a gran escala. Cultivos primarios. Cultivos tridimensionales. Aislamiento de vesículas extracelulares. 

 

Módulo 2. Trabajo en Cabinas de Bioseguridad. Presencial. Cupos limitados.

Técnica aséptica. Manejo de una línea celular. Criopreservación. Pasajes. Recuento celular. Viabilidad. Transfección. Cultivo en 3D. Cultivos primarios. Aislamiento y activación de linfocitos. Marcación con colorante vital CFSE para cuantificación de la proliferación celular por citometría de flujo. Observación y análisis al microscopio. 

 

Módulo 3. Procesamiento y Análisis de Datos. Presencial. Cupos limitados.

Microscopía óptica de cultivos celulares. Procesos biológicos observables al microscopio, de nano- a micro-escala. Criterios y requisitos para la adquisición de imágenes in vivo e in vitro. Procesamiento de imágenes y análisis estadístico: Análisis de imágenes de microscopía de epifluorescencia y confocal. Formación y restauración de imágenes en microscopía de fluorescencia multidimensional. Procesamiento digital de imágenes empleando software libre (ImageJ-FIJI). Métodos automáticos de segmentación de fluorescencia. Extracción de información cuantitativa a partir de la intensidad y distribución espacio-temporal de la fluorescencia. 

Análisis de datos de citometría de Flujo. Uso del software FlowJo (BD). Selección de poblaciones celulares según parámetros FSC y SSC. Viabilidad celular. Selección de single cell. Autofluorescencia y FMO. Análisis de expresión de marcadores por dot plot, density plot e histogramas. Aplicación de diferentes estrategias de gating. Análisis de proliferación mediante dilución de colorante vital  

Además, habrá invitados especiales.

 

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